11月11日,据海外媒体报道,法国巴黎皮埃尔与玛丽-居里大学的卢茨-杜艾团队首次将用干细胞培育的血液输入人体,并获得成功。
杜艾团队首先从一位志愿者的骨髓里抽取造血干细胞,然后利用一组“鸡尾酒”混合生长因子激发这些干细胞与红细胞相结合。在给这些人造细胞做标记以供追踪之后,他们把其中100亿个细胞(相当于2毫升血液),注射回捐献者的体内。
5天后,这些人造血细胞中的至少94%仍在这位捐献者的体内循环。26天后,41%到63%的血细胞仍然存活,天然血液的存活率也大抵如此。这些人造血细胞同天然细胞一样能干,有效地将氧气输送至全身。对此,美国西奈山医疗中心的安娜·丽塔·米利亚乔评论说:“这证明了这些人造细胞不是有两条尾巴或者三个角的怪胎,它们在人的身体里正常过活。”
杜艾表示,这是国际医学界的一大喜讯,“这一实验结果预示着血荒终结的那一天可能马上就要来临了”。尽管发达国家的献血者数量不断增多,世界仍面临着严重的血荒。在艾滋病高发地区,血源紧缺现象则更加严重。
目前,世界上还有许多研究团队在研究“人造血”。不过,其他人工合成血液的尝试都专注于创造天然血液的替代品,而非用人工的方式培养天然血液。例如,英国埃塞克斯大学的克里斯·库珀研究团队正在致力于合成一种基于血红蛋白的血液替代品。这种人造血为自然疾病引发的,特别是在偏远地区的输血问题提供了解决之道,因为其不像新鲜血液或者干细胞培育的血液那样需要冷藏,它易于保存。
干细胞造血法有其自身的优点,干细胞造血与现行的输血法更为相似,这可以减轻人们的担忧,因为人们对当前阶段的人造品的安全问题一向疑虑重重。
尽管杜艾发布在医学杂志《血液》上的这项研究成果是干细胞造血法领域的一大进步,不过用这种方法大规模生产“人造血”还有很长的路要走,因为本次实验中的输血量仅相当于一名普通病人每次输血量的1/200。(报道,来自法国巴黎皮埃尔与玛丽-居里大学的卢茨-杜艾团队首次将用干细胞培育的血液输入人体,并取得成功。
杜艾团队首先从一位志愿者的骨髓里抽取造血干细胞,然后利用一组“鸡尾酒”混合生长因子激发这些干细胞与红细胞相结合。在给这些人造细胞做标记以供追踪之后,他们把其中100亿个细胞(相当于2毫升血液),注射回捐献者的体内。
5天后,这些人造血细胞中的至少94%仍在这位捐献者的体内循环。26天后,41%到63%的血细胞仍然存活,天然血液的存活率也大抵如此。这些人造血细胞同天然细胞一样能干,有效地将氧气输送至全身。对此,美国西奈山医疗中心的安娜·丽塔·米利亚乔评论说:“这证明了这些人造细胞不是有两条尾巴或者三个角的怪胎,它们在人的身体里正常过活。”
杜艾表示,这是国际医学界的一大喜讯,“这一实验结果预示着血荒终结的那一天可能马上就要来临了”。尽管发达国家的献血者数量不断增多,世界仍面临着严重的血荒。在艾滋病高发地区,血源紧缺现象则更加严重。
目前,世界上还有许多研究团队在研究“人造血”。不过,其他人工合成血液的尝试都专注于创造天然血液的替代品,而非用人工的方式培养天然血液。例如,英国埃塞克斯大学的克里斯·库珀研究团队正在致力于合成一种基于血红蛋白的血液替代品。这种人造血为自然疾病引发的,特别是在偏远地区的输血问题提供了解决之道,因为其不像新鲜血液或者干细胞培育的血液那样需要冷藏,它易于保存。
干细胞造血法有其自身的优点,干细胞造血与现行的输血法更为相似,这可以减轻人们的担忧,因为人们对当前阶段的人造品的安全问题一向疑虑重重。
尽管杜艾发布在医学杂志《血液》上的这项研究成果是干细胞造血法领域的一大进步,不过用这种方法大规模生产“人造血”还有很长的路要走,因为本次实验中的输血量仅相当于一名普通病人每次输血量的1/200。(生物谷 Bioon.com)
doi:10.1182/blood-2011-06-362038
PMC:
PMID:
Proof of principle for transfusion of in vitro–generated red blood cells
Marie-Catherine Giarratana, Hélène Rouard, Agnès Dumont, Laurent Kiger, Innocent Safeukui, Pierre-Yves Le Pennec, Sabine François, Germain Trugnan, Thierry Peyrard, Tiffany Marie, Séverine Jolly, Nicolas Hebert, Christelle Mazurier, Nathalie Mario,Laurence Harmand13, Hélène Lapillonne, Jean-Yves Devaux, and Luc Douay
In vitro RBC production from stem cells could represent an alternative to classic transfusion products. Until now the clinical feasibility of this concept has not been demonstrated. We addressed the question of the capacity of cultured RBCs (cRBCs) to survive in humans. By using a culture protocol permitting erythroid differentiation from peripheral CD34+ HSC, we generated a homogeneous population of cRBC functional in terms of their deformability, enzyme content, capacity of their hemoglobin to fix/release oxygen, and expression of blood group antigens. We then demonstrated in the nonobese diabetes/severe combined immunodeficiency mouse that cRBC encountered in vivo the conditions necessary for their complete maturation. These data provided the rationale for injecting into one human a homogeneous sample of 1010 cRBCs generated under good manufacturing practice conditions and labeled with 51Cr. The level of these cells in the circulation 26 days after injection was between 41% and 63%, which compares favorably with the reported half-life of 28 ± 2 days for native RBCs. Their survival in vivo testifies globally to their quality and functionality. These data establish the proof of principle for transfusion of in vitro–generated RBCs and path the way toward new developments in transfusion medicine. This study is registered at http://www.clinicaltrials.gov as NCT0929266.