加样槽 Liquid Transfer Trough 移液槽：
平底和圆底(U型和V型)培养板的区别和选择:不同形状的培养板有不同用途。培养细胞，通常是选用平底的，这样便于镜下观测、有明确的底面积、细胞培养液面高度相对一致。因此做MTT等实验时，无论是贴壁和悬浮细胞，一般选用平底板。加样槽测吸光值一定要使用平底的培养板。要特別注意材质， 标示“Tissue Culture (TC) Treated”是养细胞用的。U型或V型板，一般在某些特殊要求時才使用。如在免疫学方面，当做两种不同淋巴细胞混合培养時，需要二者相互接触刺激，这时一般会选用U型板，因为细胞会由于重力的作用而聚集在很小的范围内內。圆底培养板还会用于同位素掺入的实验，需要用细胞收集仪收集细胞的培养，如“混合淋巴细胞培养”等。V型板常用做细胞杀伤、免疫学血凝集实验。加样槽细胞杀伤这种实验也可用U型板替代(加入细胞后，低速离心)。
LTT00050 50 50ml，透明 20/包，400/箱
LTT10050 100 140x60x40mm,可高压灭菌 20/包，400/箱
加样槽 Liquid Transfer Trough
7101载玻片（光边） 50片/盒
玻片尺寸：25.4×76.2mm
玻片厚度：1-1.2mm
包装尺寸：82×64×27mm
重约：270g
【材质】：玻璃
【作用】：载玻片是在实验时用来放置实验材料的玻璃片，呈长方形，较厚，透光性较好。载玻片是用显微镜观察东西时用来放东西的玻璃片，然后将盖玻片放置其上，用作观察生物。
【用法】：1、涂片法是将材料均匀地涂布在载玻片上的一种制片方法。
涂片材料有单细胞生物、小型藻类、血液、细菌培养液、动植物的疏松组织、精巢、花药等。
涂片时应注意：（1）载玻片必须清洁。（2）载玻片要持平。（3）涂层须均匀。涂抹液滴在载玻片中间偏右，用解剖刀刃或牙签等涂匀。（4）涂层要薄。用另一载玻片作推片，沿滴有涂抹液的载玻片面（二载玻片夹角应为30°-45°）由右向左轻轻推动，涂成均匀一薄层。（5）固定。如需固定可用化学固定剂或干燥法（细菌）固定。（6）染色。细菌用亚甲基蓝，血液用瑞氏染液。染色液要盖住全部涂面。（7）冲洗。用吸水纸吸干或烤干。（8）封片。长期保存用加拿大的树胶封片。
2、压片法是将生物材料置于载玻片和盖片之间，施加一定压力，将组织细胞压散的一种制片方法。
3、装片法是将生物材料采取整体封固制成玻片标本的方法，用此法可制成临时或永久装片。
装片材料有：微小生物如衣藻、水绵、变形虫、水螅，植物的叶表皮；昆虫的翅、足、口器，人的口腔上皮细胞等。
装片法制作时应注意：（1）手持载玻片时，应注意持平，或放在平台上。滴水时水量要适当，以恰好被盖玻片盖满为度。（2）应将材料用解剖针或镊子展开不使重叠，展平在同一平面上。（3）放盖玻片时，从一侧慢慢盖在水滴上，防止出现气泡。（4）染色时，将一滴染色液滴在盖玻片的一侧，用吸水纸从另一侧吸引，使盖玻片下的标本均匀着色。着色后，用同样的方法，滴一滴清水，把染色液吸出后，在显微镜下观察。
4、切片 是用从生物体上切取的薄片制成的玻片标本。
因要求不同，可用刀片进行徒手切片，也可将组织块包埋于石蜡或火棉胶中或以低温冰冻，用切片机切片。切成5～10微米薄片，供光学显微镜观察。用环氧树脂或甲基丙烯酸包埋组织块切制的超薄切片，其厚度在20～50纳米，专供在电子显微镜下观察。一般教学用的如根尖、茎的切片通称石蜡切片。
【清理方法】：用清水洗或用酒精洗,然后再用棉花或纱布擦干净（最好用擦镜纸，手指避免接触载玻片，以免在其上留下指纹，影响下次观察使用）
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